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            沙門菌多重耐藥基因島1(SGI1)研究進展

            更新時間:2023-05-25 13:34:08 閱讀: 評論:0

            函授本科畢業論文-如何做好班主任

            沙門菌多重耐藥基因島1(SGI1)研究進展
            2023年5月25日發(作者:綻開的意思)

            沙門菌多重耐藥基因島1(SGI1)研究進展

            王芳

            【摘 要】多重耐藥基因島是指細菌染色體上一段具有典型特征的基因簇,攜帶有多

            種耐藥基因,決定細菌的多重耐藥性.目前已發現在沙門菌屬和其它菌屬的細菌中攜

            帶沙門菌多重耐藥基因島1(Salmonella multi-drug resistant genomic island

            1,SGI1).由于SGI1上的耐藥基因具有可移動性,使其在細菌多重耐藥獲得與傳播機

            制的研究中具有重要意義.

            【期刊名稱】《中國抗生素雜志》

            【年(),期】2010(035)006

            【總頁數】7(P414-420)

            【關鍵詞】SGI1;多重耐藥;移動原件

            【作 者】王芳

            【作者單位】中國人民解放軍第309醫院,北京,100091

            【正文語種】

            【中圖分類】R378

            細菌的耐藥性是由耐藥基因決定的,耐藥基因可以由染色體上一些特殊的位點編碼,

            也可以由細菌的質粒攜帶。近年來在醫學細菌學領域對細菌多重耐藥的研究中出現

            了一個新概念:“耐藥基因島(resistance genomic island)或耐藥島(resistance

            island)”[1]。耐藥基因島是指編碼細菌耐藥基因簇的相對分子量比較大的染色體

            DNA片段(>10kb),其特點是島兩側一般具有重復序列和插入元件,不穩定,島

            內含有潛在的可移動元件(如整合子),編碼細菌多種耐藥的基因位于島上。研究表

            明,耐藥基因島的G+C含量與宿主菌染色體G+C含量有明顯差異,說明它是細

            菌在進化過程中獲得的[2]。發現及研究多重耐藥基因島為我們了解細菌多重耐藥

            性獲得和傳播的機制提供了有效途徑。目前已經發現在沙門菌屬中的許多菌株存在

            一個較大的耐藥基因島—SGI1,該多重耐藥基因島上攜帶有blaPSE-1floR

            aadAsultet等耐藥基因,分別編碼對氨芐西林、氯霉素、鏈霉素、磺胺類藥

            物、四環素等藥物的耐藥性[1]。在沙門菌以外的其他細菌中也發現存在該耐藥基

            因島,提示SGI1在細菌多重耐藥基因傳播和轉移過程中發揮重要的作用,現對

            SGI1的研究進展綜述如下。

            1 SGI1的發現

            沙門菌主要引起人類食源性傳染病,在美國估計每年有四百萬人因此感染發病,

            600人死亡。這些感染中,大約10%左右需要抗生素治療[3]。噬菌體DT104

            鼠傷寒沙門菌是最常見的一種致腸炎沙門菌,1989年首次從人體內分離鑒定該菌,

            到上世紀90年代初很快呈現全球流行,成為引起人類沙門菌感染的主要噬菌體型

            [4-5]。盡管在上世紀60年代對該菌已有描述,但直到80年代初,在英國分離出

            一株對氨芐西林(ampicillin)、氯霉素(chloramphenicol)、鏈霉素(streptomycin)

            磺胺類藥物(sulfonamides)、四環素(tetracycline)(五種抗生素簡寫為ACSSuT)

            時耐藥的DT104型菌,才發現該菌有多重耐藥性[5]。進一步的研究發現,DT104

            型菌株的多重耐藥決定區(MDR)是位于染色體上的一個較大區域,該區域被命名

            SGI1[6]。發現多重耐藥基因定位于染色體引起很大關注,因為這表明即使沒有

            抗生素選擇性壓力,耐藥性也會穩定持續存在。然而,引起更大關注的是在其他

            11種血清型的沙門菌中也發現了該耐藥基因島存在[7-12],其他菌株一旦獲得該

            耐藥基因島,即表現和DT104菌株相同的多重耐藥性。2000-2002年對法國分離

            的所有腸炎沙門菌的一項研究表明,該國有83%的菌株攜帶有SGI1或其變異體

            [13]Chiu等對臺灣流行的22株傷寒沙門菌Derby株進行SGI1多重耐藥基因

            島的檢測,發現有13株沙門菌攜帶有SGI1抗性基因島[14]

            2 SGI1的結構特征

            SGI1是一段長43kb的基因島,有44個開放讀碼框(ORFs),許多讀碼框與已知

            基因具有同源性,也有一些基因功能未知。抗生素抗性基因集中在SGI1上一段

            13-kb的區段上,該區段稱為多重耐藥基因區(MDR region)[6-7,15]。目前還不

            清楚DT104型沙門菌最初是從哪里、如何獲得SGI1的,但該基因島上的floR

            (介導氯霉素抗性)與已知位于銅綠假單胞菌(Pudomonas aeruginosa)結合型

            質粒上的氯霉素抗性基因cmLA53%的核苷酸序列是一致的[15],同時發現介

            導四環素抗性的區域與鰻弧菌(Vibrio anguillarum)的抗性質粒高度相似,這些抗

            性基因中G+C的含量不同于沙門菌染色體,表明這些基因通過水平轉移獲得[6]

            其他抗性基因位于島上的Ⅰ類整合子內,Ⅰ類整合子可以在許多革蘭陰性細菌中進

            行水平轉移[7]

            在研究DT104型沙門菌株形成多重耐藥的分子機制時,Sandvang[15]最先發

            現至少兩個抗性基因存在于Ⅰ類整合子內,Ⅰ類整合子與許多革蘭陰性細菌的耐藥

            性有關,其結構特征是5'保守區內(5'-CS)含有整合酶基因intI13'保守區內含有

            qacEΔ1sul1基因,中央attI整合位點內可能含有12個基因盒[17]。設計多

            重耐藥DT104菌株Ⅰ類整合子保守區引物進行PCR擴增,對擴增產物進行序列

            分析,發現了兩個基因盒[14],第一個基因盒長1.0kb,與位于銅綠假單胞菌

            (Pudomonas aeruginosa)耐藥質粒攜帶的InC整合子上的aadA2基因盒同源

            [18],第二個基因盒攜帶blaP1 基因(也稱為blaPSE-1blaCARB-2基因,介導

            β-內酰胺類藥物抗性),這是首次報道的整合子內帶有β-內酰胺酶基因(blaP1)盒,

            該整合子被命名為InD[16]P-22樣噬菌體轉導試驗表明,DT104菌株的

            ACSSuT耐藥表型可以被轉導,說明這些耐藥基因簇集于染色體上[19]Briggs

            Fratamico通過克隆和測序,證明多重耐藥DT104型沙門菌(耐藥表型

            ACSSuT)的全部耐藥基因與一個13kbXbal片段有關系(1)[15]。整合子InC

            InD分別位于片段的5'末端和3'末端,序列分析表明整合子InC上的sul1基因

            部分缺失,可能沒有功能。但整合子InD上的sul1基因是完整的。整合子InC

            游區基因有53%與銅綠假單胞菌攜帶的氯霉素抗性基因cmLA一致。另外一項研

            究表明ACSSuT耐藥型DT104株攜帶一個floR基因,該基因屬于12-TMS(跨膜

            區段)外排家族[20]。在毗鄰介導氯霉素抗性的floR基因下游區,鑒定到介導四環

            素抗性的tetRtet(G)基因。有趣的是,對整合子InD上的整合酶基因序列分析

            表明,5'部分區段到3'末端被一個大約350bpgroEL基因替代[15]。位于整合

            InCInD之間區域的序列顯示與殺魚巴斯德菌(Pasteurella piscicida)和鰻弧

            (larum)所攜帶R質粒的序列高度同源(序列號分別為:D37826

            S52437)[15]。隨后,在加拿大分離的一組人源和非人源DT104株確認了該區域

            的基因組成和結構[21]2000年,Boyd等從加拿大分離的一株人源DT104株中

            鑒定出抗性基因元件的大小及染色體插入位點[6]SGI1一詞從此用來描述一段插

            入到染色體thdF基因3'末端、兩側為18-bp不完整的正向重復序列、長43kb

            基因島。在DT104分離株中,發現SGI1位于一個隱藏的逆轉錄噬菌體元件上游

            區,這個逆轉錄噬菌體元件位于染色體上yidY基因上游區。2001年,Boyd等對

            這個基因島的全部基因序列進行注釋[7]SGI144個開放讀碼框(ORFs)組成(

            記為S001-S044,見圖1)。根據與已知基因的同源性,開放讀碼框可被分為7

            主群:DNA結合群(S001S002S020S027S028S036S037S043)

            DNA復制群(S003);接合轉移群(S005S011-12S023S024S026);調控

            (S004S006S007S033S035);耐藥群(S029-32S034S038-40)

            其他功能群(S025S026)和未知功能基因群或假定的開放讀碼框(S008-10

            S013-19S021-22S041-42S044)。接合轉移相關基因的存在說明這個元件

            可能來源于或至少部分來源于質粒,很多與接合轉移相關的基因可能與SGI1的可

            移動性相關。許多開放讀碼框與調節基因同源,因此有可能影響SGI1上其他基因

            DT104基因組中其他基因的表達。

            1 噬菌體DT104型鼠傷寒沙門菌SGI1完整的基因結構圖(GenBank 序列號:

            AF261825)Fig.1 Genetic organization of the completeSGI1from Salmonella

            TyphimuriumDT104(GenBank accession number:AF261825)

            序列分析表明基因島上多重耐藥區的兩側為反向重復序列,分別標記為IRi

            IRt(1)。這些反向重復序列限定了一個名為In104的復雜整合子的界限[11]。整

            合子In104與整合子In4結構相似,但有2attI1位點,這2個位點分別來自

            整合子InCInD,通過它們可以插入基因盒。整合子In104兩側為5bp正向重

            復序列,表明它是SGI1通過轉座事件得到的[22]

            3 SGI1的變異體及變異機制

            大部分多重耐藥DT104菌株攜帶SGI1,耐藥表型為ACSSuT。但是,許多

            DT104菌株和Agona菌株表現出不同的耐藥表型,人們開始關注SGI1是否存在

            變異體[23]。利用DNA雜交、PCR、序列分析等分子生物學技術分別研究耐藥表

            型分別為ACSSuTTm(Tm:甲氧芐氨嘧啶)ASSuTmAsuASSuT菌株攜帶的

            耐藥基因,結果表明每種不同表型的菌株都攜帶一個SGI1的變異體,PCR檢測

            SGI1接合區域左側的thdF基因和右側的逆轉錄子或yidY基因均為陽性。研究發

            現在非鼠傷寒沙門菌中沒有隱藏的逆轉錄子噬菌體,SGI1位于yidY基因的上游。

            研究還發現一株攜帶SGI1、耐藥表型為ACSSuTTm的傷寒沙門菌Agona菌株,

            sul1基因的下游插入一個長度4.1kbDNA片段,片段上包含了一個編碼甲

            氧芐氨嘧啶抗性的dfrA10基因和3'-CS的另外一個拷貝,該區域還包括含有

            orf513假定基因的2.1kb的共同區段(CR1)SGI1的這個變異體命名為SGI1-A

            一株耐藥表型為Asu的菌株的SGI1上攜帶有完整的1類整合子,這個整合子中

            包含一個blaP1基因盒,這個變異體命名為SGI1-B。在耐藥表型為Ssu

            DT104菌株和Agona菌株中發現一個類似的結構,只是在整合子基因盒中帶有

            aadA2基因,這個變異體稱為SGI1-C。一株耐藥表型為ASSuTmAgona株攜

            帶一個SGI1-C型結構,但在CR1/dfrA10區又與SGI1-A相同,這個變異體命名

            SGI1-D。此外,還有一株耐藥表型為ASSuTDT104株有一個IS6100的拷

            貝插入到floR基因并使該基因失活,IS6100拷貝之間的同源重組使整合子中間區

            域的方向顛倒,SGI1的這個變異體成為SGI1-E。另外,Carattoli等從意大利分

            離的DT104型和相關噬菌體型沙門菌株中,發現了SGI1SGI1-C[24],這個研

            究小組也注意到一株DT104株攜帶In104整合子,但在SGI1的左側有缺失,由

            于這個SGI1變異體左側末端結構還沒有完全研究清楚,該變異體尚為命名。

            Weill等對法國2000-2003年間分離的多重耐藥Paratyphi B株的一項研究表明,

            77%菌株帶有SGI14%帶有SGI1-C2%帶有SGI1-B[13]。另外一項收集了比

            利時1992-2002年至少對一種抗生素耐藥的Agona株的研究發現,55%的菌株

            帶有SGI1或其變體[25],其中85%SGI1-A2.3%SGI12.3%SGI1-C

            還有2.3%帶有一個稱為SGI1-G的新的變異體,其耐藥表型為ASSuTmSGI1-

            G在結構上與SGI1-B相似,也帶有在SGI1-ASGI1-D中發現的CR1/dfrA10

            區域。在這項研究中,有7株耐藥表型ACSSuT的菌株沒有檢測到右側的結合位

            點基因yidY,對這些菌株中的3株菌進行序列分析,結果表明,這些菌株帶有一

            個與SGI1-A相似的結構,只是在SGI1-A3'末端毗鄰染色體DNA處出現各種

            缺失。這些缺失在CR1右側末端27bp處即開始,擴展到與染色體DNA連接處,

            由此產生三種變異株,分別是SGI1-AD1R(缺失7.1kb)SGI1-AD2R(缺失7.7kb)

            SGI1-AD3R(缺失8.5kb)

            另一株耐藥表型為ACSSuTTmAlbany株,帶有一個與SGI1結構相似的變異

            體,但aadA2基因被一個基因盒替代,該基因盒帶有一個甲氧芐氨嘧啶抗性基因

            dfrA1和一個未知功能的orfC基因[9],這個變體標記為SGI1-F2株耐藥表型為

            ACSSuTGm(Gm:慶大霉素)Newport[11],分子特征顯示它們攜帶與SGI1

            相似的結構,但aadA2基因分別被兩個不同的基因盒取代,第一個被帶有

            aac(3)-Id基因的基因盒取代,第二個被帶有aadA7的基因的基因盒取代。這兩

            個變異島被標記為SGI1-H。另外一項研究涉及澳大利亞分離的幾個血清型的菌株,

            Paratyphi B型菌株中發現SGI1Kiambu型菌株中發現SGI1-AInfantis

            菌株中發現 SGI1-DCerro Du¨sldorf 菌株中發現SGI1-FDerby菌株中

            發現SGI1-IEmek菌株中發現SGI1-J[12]SGI1-I(耐藥表型為CSSuTTm)結構

            SGI1相似,只是blaP1基因被dfrA1/orfC基因盒取代。SGI1-J(耐藥表型

            CSuT)SGI1-F結構相似,只是缺失了帶blaP1的完整基因盒、qacEΔ1和一些

            毗鄰的序列。Levings等研究發現在一株多重耐藥腸炎沙門菌Kentucky菌株中存

            SGI1的另一個變異體,命名為SGI1-K,該變體由一個攜帶aacA5-aadA7

            因盒的In41類整合子和一個汞抗性組件組成,汞抗性基因替代了SGI1的骨架

            部分,汞抗性區域和另一個未命名的10kb左右的片段整合于反向重復序列Irt

            SG13'保守區段之間,這項研究表明SGI島上的多重耐藥區與質粒上的多重耐

            藥區一樣,能夠整合新的DNA片段[26]Cloeckaert等報到了腸炎沙門菌

            Newport株攜帶的SGI1的另一個變異體SGI1-L,該變異體上攜帶一個含有

            dfrA15基因對甲氧芐氨嘧啶耐藥的基因盒[27].荷蘭科學家從馬體內分離到攜帶

            SGI1變異體的傷寒沙門菌,經分析發現,該變體為一種新型變體,命名為SGI1-

            M,在該變異體中,SGI1中的aadA2基因被aadB基因替代[28]

            迄今為止,已經發現在許多多重耐藥沙門菌中存在SGI1及其變異體,根據變異體

            發現時間先后和抗性基因簇的不同將SGI1的變異體從SGI1-A命名到SGI-M[26-

            28]SGI1通過染色體重組事件和在attI位點上發生的抗性基因的替換形成這些

            變異體[26]。隨著研究的不斷深入,還將有更多的SGI1變異體被發現。

            無論SGI1從哪里起源,產生耐藥性變異的最可能是由相同DNA片段之間同源重

            組導致的。重組可以發生在復制后的3'-CS5'-CS、或者SGI1元件內部、或者

            SGI1元件和共生質粒攜帶的1類整合子之間[9,12,22,24]。比如,重組發生在

            SGI15'-CS之間會產生SGI1-B,而重組發生在3'-CS會產生SGI1-C。并且,

            質粒上的1類整合子可以通過和SGI15'-CS3'-CS區域重組交換基因盒,在

            SGI1-C和質粒上攜帶blaP1基因盒的整合子之間以這種方式交換而形成SGI1-B

            試驗已證明,一個由CR1/dfrA10/sul1衍生的環狀結構可以通過sul1序列整合到

            1類整合子中[23]。并且,在沒有甲氧芐氨嘧啶條件下,插入區域丟失的頻率很低。

            來自質粒或SGI1變體的攜帶這些區域的1類整合子元件可以在菌體內形成環狀結

            構,通過正向重復sul1區域分子內的同源重組,重組到SGI13'-CS區域形成

            SGI1-A,或SGI1-C3'-CS區域形成SGI1-D

            4 SGI1的移動性

            在許多血清型的腸炎沙門菌中發現SGI1,在鼠傷寒沙門菌基因組內該島位于隱藏

            的逆轉錄噬菌體上游區thdF基因的3'末端,其他血清型傷寒菌中該島位于yidY

            基因的上游區。在所有血清型傷寒沙門菌中,SGI1左側均為不完整的18-bp 正向

            重復序列,右側接點整合在沙門菌染色體上[7-9,11]。右側接點處的正向重復序列

            (DR-R)與不攜帶SGI1的腸炎沙門菌thdF基因的最后18bp完全相同。在所有血

            清型的沙門菌中左側接點處的正向重復序列(DR-L)完全相同,說明這些序列均來

            SGI1的供體菌。在不同血清型腸炎沙門菌染色體上鑒定出SGI1、染色體上

            SGI1兩側不完整的重復序列、SGI1攜帶整合酶、切割酶和接合功能區均表明該基

            因島能進行水平轉移。

            2005年,Doublet等報道SGI1從腸炎沙門供體菌接合轉移給不攜帶SGI1的腸

            炎沙門菌和大腸埃希菌受體菌,并以位點特異重組方式整合到受體菌染色體上[25]

            第一步,待整合的SGI1的左右末端特異性接合形成環狀SGI1PCR檢測染色體

            外環型的SGI1,研究發現精確切除染色體上SGI1需要SGI1編碼的整合酶(Int

            2),該酶與“人”字型整合酶家族相似。第二步,接合轉移SGI1需要輔助質粒

            存在。SGI1由供體菌向受體菌轉移時,接合型IncC質粒R55因此穿過SGI1

            動,以這種方式,SGI1的接合轉移以每個供體菌有10-510-6個轉接合子的頻

            率發生。如果缺乏Int整合酶基因,SGI1供體則不能形成SGI1轉接合子。第三步,

            在環狀SGI1(attP)18bp序列與腸炎沙門菌和大腸埃希菌染色體thdF基因

            (attB)3'末端相似的18bp 序列之間通過位點特異重組將SGI1整合到染色體上。

            SGI1為不能自身轉座的可移動元件,因此可被分類到整合型移動元件中

            (integrativemobilizable elementsIMEs)[24]。通過接合轉移傳遞SGI1有助于

            耐藥基因在不同血清型的腸炎沙門菌之間傳播。推測SGI1可以通過水平轉移傳播

            到其他攜帶保守thdF基因的腸道病原菌如大腸埃希菌、志賀菌屬或弧菌屬中[23]

            5 其他細菌攜帶的SGI1

            日本廣島大學的一項研究報道,在奇異變形菌(Proteus mirabilis)臨床分離株中發

            現一個攜帶多重耐藥基因的新的SGI1變體,該臨床分離株分離自一位糖尿病足患

            者的感染部位。這株奇異變形菌具有典型的SGI1多重耐藥表型,除對甲氧芐氨嘧

            啶和萘啶酸耐藥外,還對氨芐西林、氯霉素、鏈霉素、磺胺類藥物和四環素表現多

            重耐藥。對耐藥基因的分子結構研究表明,這株奇異變形菌帶有一個與SGI1相似

            的結構,除了編碼對鏈霉素和大觀霉素耐藥的aadA2基因被編碼甲氧芐氨嘧啶的

            dfrA15基因取代外,這個SGI1樣結構與典型的SGI1沒有差別。并且,奇異變形

            菌染色體外的環型SGI1的核苷酸序列與DT104型鼠傷寒沙門菌完全相同。但是,

            PCR結果卻發現,在奇異變形菌SGI1樣結構的左側和右側均沒有檢測到代表

            SGI1整合到腸炎沙門菌染色體上的整合位點。因此,這個SGI1的新的變體可能

            通過不同位點整合在奇異變形菌的染色體上。在該菌株中還鑒定出一個Tn1826

            衍生的僅僅攜帶2個基因盒(sat2aadA1)2類整合子。該研究首次報道了在

            沙門菌屬以外的細菌中發現SGI1[29]

            2 SGI1位點特異性整合與切除模型Fig.2 Model of the site-speci fi c

            integration and excision of SGI1SGI1 特異整合于染色體上 thdF 基因的 3'

            (attB 位點)。染色體上的 attB 位點與SGI1上的attP位點重組后分別形成左右兩

            側的接點(DR-LDR-R)SGI1 integrates speci fi cally at the 3'end of the

            chromosomal thdF gene(attB).The left and right junctions (DR-L and DR-R)

            are formed by the recombination between the chromosomal attB site and

            theSGI1attP site.

            Boyd 等對來自中國的30株奇異變形菌進行了SGI1的篩查,這些變形菌分別從

            病人糞便、食品和環境中分離到,PCRDNA序列分析表明:一株攜帶SGI1

            一株攜帶SGI1的變體SGI1-I;另外三株攜帶SGI1的一個新的變異體命名為

            SGI1-O。該項研究表明,SGI1作為攜帶耐藥基因的可移動原件已在不同地域、不

            同生物之間傳播擴散[30]

            6 研究SGI1的意義

            SGI1的發現使我們在認識細菌的多重耐藥性方面更進了一步,SGI1在攜帶和傳播

            細菌耐藥性方面發揮著重要作用,給細菌耐藥性的控制帶來了困難。目前對于

            SGI1的研究還很有限,許多問題有待解決,如SGI1是從哪里起源,如何形成;

            在其他種屬的多重耐藥菌中是否普遍存在;SGI1內部是否有一些可以單獨轉移的

            基因或基因盒;SGI1是否可以整合新的耐藥基因;SGI1是否可以作為其他細菌耐

            藥的來源以及如何控制細菌SGI1上耐藥基因的表達等等,回答這些問題,有必要

            進行更全面和深入的研究。

            參考文獻

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            琴瑟之好-青云志結局

            沙門菌多重耐藥基因島1(SGI1)研究進展

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